دانلود کتاب Fatty acids chemistry, synthesis, and applications – شیمی ، سنتز و کاربردهای اسیدهای چرب

دسته بندی :
اطلاعات کتاب
  • جلد
  • سری
  • ویرایش
  • سال 2017
  • نویسنده (گان) Ahmad, Moghis U
  • ناشر AOCS
  • زبان English
  • تعداد صفحات 617
  • حجم فایل 14.88MB
  • فرمت فایل pdf
  • شابک 9780128095218, 0128095210, 9780128095447, 012809544X
قیمت محصول :

۴۵,۰۰۰ تومان

با خرید این محصول، ۲,۲۵۰ تومان به کیف پول شما بازگشت داده می‌شود

روند خرید و دریافت کتاب‌ها بدون هیچ اختلالی انجام می‌شود.
تمامی فایل‌ها بر روی سرورهای داخلی میزبانی می‌شوند تا بتوانید به راحتی و در لحظه آن‌ها را دانلود کنید. در صورت بروز هرگونه مشکل یا نیاز به راهنمایی، لطفاً از طریق « صفحه تماس باما» با تیم پشتیبانی در ارتباط باشید.

تمامی کتاب های موجود در وبسایت سای وان به زبان انگلیسی میباشد

توضیحات

Front Cover — Fatty Acids — Copyright Page — Contents — List of Contributors — Meet the Editor — Preface — 1 History of Fatty Acids Chemistry — 1.1 Introduction — 1.2 Early Fatty Acid History — 1.3 Major Developments in the Oleochemical Industry — 1.3.1 Fat Splitting — 1.3.1.1 Continuous Fat Splitting — 1.3.2 Catalytic Hydrogenation — 1.3.3 Fatty Acid Distillation — 1.3.4 Fatty Alcohols — 1.3.4.1

2.5.2.1 Autoxidation and Photo-Oxygenation — 2.5.2.2 Hydrogenation — 2.5.2.3 Epoxidation and Hydroxylation — 2.5.2.4 Oxidative Scission — 2.5.2.5 Metathesis — 2.5.2.6 Dimerization — 2.5.2.7 Hydroformylation — 2.6 Conclusion — References — 3 Epoxy Fatty Acids: Chemistry and Biological Effects — 3.1 Introduction — 3.2 Natural Occurrence and Structure of Epoxy Fatty Acids — 3.2.1 Oleic and Linoleic Acid Monoepoxides and Hydroxides — 3.2.2 Arachidonic Acid Monoepoxides — 3.2.3 Eicosapentaenoic Acid and Docosahexaenoic Acid Monoepoxides — 3.3 Chemical Synthesis — 3.3.1 Direct Epoxidation — 3.3.2 Chemo-Enzymatic Perhydrolysis — 3.3.3 Other Chemo-Enzymatic Epoxidations — 3.4 Biosynthesis of Epoxy Fatty Acids — 3.4.1 Oxygenases and Lipoxygenases — 3.4.2 Peroxygenases — 3.4.3 Cytochrome P450-Like Oxygenases — 3.5 Analysis of Epoxy Fatty Acids — 3.5.1 Resolution of Regioisomers — 3.5.2 Resolution of Enantiomers — 3.5.3 GC/MS and LC/MS Identification of Lipid Epoxides — 3.6 Biological Effects — 3.6.1 Lipid Signaling — 3.6.2 Cellular Effects — 3.6.3 Systemic Effects — 3.7 Pathological Effects — 3.7.1 Toxicity — 3.7.2 Inflammation and Pain — 3.7.3 Angiogenesis and Cardiovascular Disease — 3.7.4 Cancer — 3.8 Conclusion — Abbreviations — References — 4 Acetylenic Epoxy Fatty Acids: Chemistry, Synthesis, and Their Pharmaceutical Applications — 4.1 Introduction — 4.2 Occurrence Epoxy Acetylenic Fatty Acids in Nature — 4.3 Lipids Containing Epoxy Acetylenic Fatty Acids — 4.4 Epoxy Acetylenic Furanoid and Thiophene Fatty Acid and Derivatives — 4.5 Pyranone and Macrocyclic Epoxides — 4.6 Acetylenic Cyclohexanoid Epoxy Fatty Acids — 4.7 Determination or Epoxy Acetylenic Lipids — 4.8 Synthesis of Epoxy Acetylenic Lipids — 4.9 Concluding Remarks — References — Further Reading

5 Carbocyclic Fatty Acids: Chemistry and Biological Properties — 5.1 Introduction — 5.2 Naturally Occurring Cyclopropene Fatty Acids — 5.2.1 The Halphen Test — 5.2.2 Isolation of Cyclopropene Fatty Acids From Seed Oils — 5.2.3 Chemical Characterization — 5.2.3.1 Hydrogenation — 5.2.3.2 Oxidation — 5.2.3.3 Reduction — 5.2.3.4 Halogenation — 5.2.3.5 Polymerization — 5.3 Synthesis and Characterization of Sterculic Acid — 5.3.1 Characterization of Dihydrosterculic Acid — 5.3.2 Total Synthesis of cis-Cyclopropane Fatty Acids — 5.3.3 Deuterated Cyclopropene Fatty Acids — 5.4 Biosynthesis of Cyclopropane and Cyclopropene Fatty Acids — 5.5 Mass Spectrometry of Cyclopropene Fatty Acids — 5.5.1 Gas Chromatography-Mass Spectrometry Analysis of Cyclopropene Fatty Acids — 5.5.2 Gas Chromatography-Mass Spectrometry Analysis of Cyclopropane Fatty Acids — 5.6 Physiological Properties of Cyclopropene Fatty Acids — 5.7 Cyclopropaneoctanoic Acid 2-Hexyl in Human Adipose Tissue and Serum — 5.7.1 Cyclopropaneoctanoic Acid 2-Hexyl in Patients With Hypertriglyceridemia — 5.8 Leishmania Cyclopropane Fatty Acid Synthetase — 5.8.1 Leishmania: A Fungal Infection — 5.9 Conclusion — References — Further Reading — 6 Modification of Oil Crops to Produce Fatty Acids for Industrial Applications — 6.1 Introduction — 6.2 Key Aspects of Plant Oil Biosynthesis — 6.3 Major Oil Crops — 6.3.1 Oil Palm (Elaeis guineensis) — 6.3.2 Soybean (Glycine max) — 6.3.3 Brassica Oilseed Species (Brassica napus, Brassica rapa, Brassica oleracea, Brassica carinata) — 6.3.4 Sunflower (Helianthus annuus) — 6.4 Minor Oil Crops — 6.4.1 Alfalfa (Medicago sativa, Medicago falcata) — 6.4.2 Almond (Prunus dulcis, Prunus amygdalus, Amygdalus communis) — 6.4.3 Avocado (Persea americana, Persea gratissima) — 6.4.4 Blackcurrant (Ribes niger)

6.4.5 Borage (Borago officinalis) — 6.4.6 Borneo Tallow (Shorea stenoptera) — 6.4.7 Camelina (Camelina sativa) (Section 6.5 Also) — 6.4.8 Castor (Ricinus communis) — 6.4.9 Cocoa (Theobroma cacao) — 6.4.10 Coconut (Cocos nucifera) — 6.4.11 Coriander (Coriandrum sativum) — 6.4.12 Cottonseed (Gossypium hirsutum, Gossypium barbadense) — 6.4.13 Crambe (Crambe abyssinica, Crambe hispanica) (Section 6.5 Also) — 6.4.14 Cuphea spp. — 6.4.15 Dimorphotheca (Dimorphotheca pluvialis) — 6.4.16 Echium (Echium plantagineum) — 6.4.17 Flax (Linum usitatissimum) — 6.4.18 Hazelnut (Corylus avellana) — 6.4.19 Jatropha curcas (See Section 6.5) — 6.4.20 Jojoba (Simmondsia chinensis) — 6.4.21 Lesquerella (Lesquerella fendleri) (See Section 6.5) — 6.4.22 Maize (Corn — Zea mays) — 6.4.23 Meadowfoam (Limnanthes alba) — 6.4.24 Mustard (Brassica alba, Brassica carinata, Brassica hirta, Brassica juncea, Brassica nigra) — 6.4.25 Oats (Avena sativa) — 6.4.26 Olive (Olea europaea) — 6.4.27 Peanut (Ground Nut, Arachis hypogaea) — 6.4.28 Pine Nuts (Pinus spp.) — 6.4.29 Poppy (Papaver somniferum) — 6.4.30 Rice (Oryza sativa) Bran Oil — 6.4.31 Safflower (Carthamus tinctorius) — 6.4.32 Shea (Butyrospermum parkii, Shea Butter, Karate Butter) — 6.4.33 Tall — 6.4.34 Tung (Aleurites fordii) — 6.4.35 Vernonia Oils — 6.5 Emerging Industrial Oil Crops — 6.6 Prospects for Production of Industrial Oils in Vegetative Tissue — Acknowledgments — References — Further Reading — 7 Microbial Production of Fatty Acids — 7.1 Introduction — 7.2 The Process of Lipid Accumulation in Oleaginous Microorganisms — 7.3 Economic Considerations-Heterotrophic Microorganisms — 7.4 Economic Considerations-Phototrophic Microorganisms — 7.5 Production of PUFAs — 7.5.1 Nutritionally Important Fatty Acids-Background Information

7.5.2 Production of Gamma-Linolenic Acid (GLA 18:3 n-6) — 7.5.3 Production of Arachidonic Acid (ARA 20:4 n-6) — 7.5.4 Production of Docosahexaenoic Acid (DHA 22:6 n-3) — 7.5.5 Production of Eicosapentaenoic Acid (EPA 20:5 n-3) — 7.5.6 Production of EPA/DHA Mixtures as Alternatives to Fish Oils — 7.6 Safety Aspects — 7.7 Future Prospects — References — 8 Chemical Derivatization of Castor Oil and Their Industrial Utilization — 8.1 Introduction — 8.2 Derivatives of Castor Oil Based on Unsaturation of Ricinoleic Acid — 8.2.1 Hydrogenated Castor Oil — 8.2.2 Epoxy Castor Oil — 8.2.3 Ozonolysis of Castor Oil — 8.2.4 Preparation of 9,10,12-Trihydroxy Octadecanoic Acid — 8.2.5 Halogenated Derivatives of Castor Oil — 8.2.6 Novel Derivatives of Ricinoleic Acid Employing Metathesis Reaction — 8.3 Derivatives of Castor Oil Based on Hydroxy Functionality of Ricinoleic Acid — 8.3.1 Dehydrated Castor Oil and Dehydrated Castor Oil Fatty Acids — 8.3.2 Sulfated Castor Oil (Turkey Red Oil) — 8.3.3 Acetylated Castor Oil — 8.3.4 Castor Oil-Based Estolides — 8.3.5 Castor Oil-Based Polymer Products — 8.3.6 Potent Hydroxy Derivatives of Ricinoleic Acid — 8.4 Derivatives Based on Ester Functionality of Castor Oil — 8.4.1 Hydroxy Fatty Acid Esters — 8.4.2 Castor Oil-Based Biodiesel — 8.4.3 Preparation of Ricinoleyl Alcohol — 8.4.4 Ricinoleic Acid-Based Amides — 8.4.5 Ethanolamides of Castor Oil Fatty Acids — 8.5 Unique Derivatives of Castor Oil — 8.5.1 Castor Oil-Based Dimer Acids — 8.5.2 10-Undecenoic Acid and Heptaldehyde — 8.5.3 Sebacic Acid and 2-Octanol — References — 9 Chemical Modification of High Free Fatty Acid Oils for Biodiesel Production — 9.1 Introduction — 9.2 Production of Biodiesel — 9.2.1 Types of Feedstocks — 9.2.2 The Potential of High FFA Feedstocks in Biodiesel Production

9.2.3 Challenges of Processing High FFA Feedstocks Read more…

Abstract: Front Cover — Fatty Acids — Copyright Page — Contents — List of Contributors — Meet the Editor — Preface — 1 History of Fatty Acids Chemistry — 1.1 Introduction — 1.2 Early Fatty Acid History — 1.3 Major Developments in the Oleochemical Industry — 1.3.1 Fat Splitting — 1.3.1.1 Continuous Fat Splitting — 1.3.2 Catalytic Hydrogenation — 1.3.3 Fatty Acid Distillation — 1.3.4 Fatty Alcohols — 1.3.4.1 Guerbet Alcohols — 1.3.5 Estolides — 1.3.6 Dimer and Trimer Cyclic Fatty Acids — 1.3.7 Hydroformylation of Fatty Acids — 1.3.8 Ozonolysis of Fatty Acids and Triglycerides — 1.4 Contributions of Analytical Chemistry to Fatty Acids — 1.5 Recent Developments in Fatty Acids — 1.6 Conclusion — References — 2 Naturally Occurring Fatty Acids: Source, Chemistry, and Uses — 2.1 Introduction — 2.2 Production of Naturally Occurring Fatty Acids — 2.2.1 Chemical Splitting — 2.2.2 Lipase Splitting — 2.3 Purification of Fatty Acids — 2.3.1 Simple Distillation — 2.3.2 Fractional Distillation — 2.3.3 Molecular Distillation — 2.3.4 Crystallization — 2.3.5 Urea Fractionation — 2.4 Sources and Types of Naturally Occurring Fatty Acids — 2.4.1 Saturated Fatty Acids — 2.4.2 Unsaturated Fatty Acids — 2.4.2.1 Monounsaturated Fatty Acids — 2.4.2.2 Polyunsaturated Fatty Acids — 2.4.2.2.1 The n-6 Polyunsaturated Fatty Acids — 2.4.2.2.2 The n-3 Polyunsaturated Fatty Acids — 2.4.2.3 Conjugated Polyunsaturated Fatty Acids — 2.4.3 Hydroxy Fatty Acids — 2.4.4 Acetylenic Fatty Acids — 2.4.5 Allenic and Cumulenic Fatty Acids — 2.4.5.1 Allenic Fatty Acids — 2.4.5.2 Cumulenic Fatty Acids — 2.5 Chemistry of Naturally Occurring Fatty Acids — 2.5.1 Reactions at the Carboxylic Acid Group — 2.5.1.1 Reduction — 2.5.1.2 Esterification — 2.5.1.3 Amination — 2.5.1.4 Deoxygenation — 2.5.2 Reactions at Unsaturated Sites

2.5.2.1 Autoxidation and Photo-Oxygenation — 2.5.2.2 Hydrogenation — 2.5.2.3 Epoxidation and Hydroxylation — 2.5.2.4 Oxidative Scission — 2.5.2.5 Metathesis — 2.5.2.6 Dimerization — 2.5.2.7 Hydroformylation — 2.6 Conclusion — References — 3 Epoxy Fatty Acids: Chemistry and Biological Effects — 3.1 Introduction — 3.2 Natural Occurrence and Structure of Epoxy Fatty Acids — 3.2.1 Oleic and Linoleic Acid Monoepoxides and Hydroxides — 3.2.2 Arachidonic Acid Monoepoxides — 3.2.3 Eicosapentaenoic Acid and Docosahexaenoic Acid Monoepoxides — 3.3 Chemical Synthesis — 3.3.1 Direct Epoxidation — 3.3.2 Chemo-Enzymatic Perhydrolysis — 3.3.3 Other Chemo-Enzymatic Epoxidations — 3.4 Biosynthesis of Epoxy Fatty Acids — 3.4.1 Oxygenases and Lipoxygenases — 3.4.2 Peroxygenases — 3.4.3 Cytochrome P450-Like Oxygenases — 3.5 Analysis of Epoxy Fatty Acids — 3.5.1 Resolution of Regioisomers — 3.5.2 Resolution of Enantiomers — 3.5.3 GC/MS and LC/MS Identification of Lipid Epoxides — 3.6 Biological Effects — 3.6.1 Lipid Signaling — 3.6.2 Cellular Effects — 3.6.3 Systemic Effects — 3.7 Pathological Effects — 3.7.1 Toxicity — 3.7.2 Inflammation and Pain — 3.7.3 Angiogenesis and Cardiovascular Disease — 3.7.4 Cancer — 3.8 Conclusion — Abbreviations — References — 4 Acetylenic Epoxy Fatty Acids: Chemistry, Synthesis, and Their Pharmaceutical Applications — 4.1 Introduction — 4.2 Occurrence Epoxy Acetylenic Fatty Acids in Nature — 4.3 Lipids Containing Epoxy Acetylenic Fatty Acids — 4.4 Epoxy Acetylenic Furanoid and Thiophene Fatty Acid and Derivatives — 4.5 Pyranone and Macrocyclic Epoxides — 4.6 Acetylenic Cyclohexanoid Epoxy Fatty Acids — 4.7 Determination or Epoxy Acetylenic Lipids — 4.8 Synthesis of Epoxy Acetylenic Lipids — 4.9 Concluding Remarks — References — Further Reading

5 Carbocyclic Fatty Acids: Chemistry and Biological Properties — 5.1 Introduction — 5.2 Naturally Occurring Cyclopropene Fatty Acids — 5.2.1 The Halphen Test — 5.2.2 Isolation of Cyclopropene Fatty Acids From Seed Oils — 5.2.3 Chemical Characterization — 5.2.3.1 Hydrogenation — 5.2.3.2 Oxidation — 5.2.3.3 Reduction — 5.2.3.4 Halogenation — 5.2.3.5 Polymerization — 5.3 Synthesis and Characterization of Sterculic Acid — 5.3.1 Characterization of Dihydrosterculic Acid — 5.3.2 Total Synthesis of cis-Cyclopropane Fatty Acids — 5.3.3 Deuterated Cyclopropene Fatty Acids — 5.4 Biosynthesis of Cyclopropane and Cyclopropene Fatty Acids — 5.5 Mass Spectrometry of Cyclopropene Fatty Acids — 5.5.1 Gas Chromatography-Mass Spectrometry Analysis of Cyclopropene Fatty Acids — 5.5.2 Gas Chromatography-Mass Spectrometry Analysis of Cyclopropane Fatty Acids — 5.6 Physiological Properties of Cyclopropene Fatty Acids — 5.7 Cyclopropaneoctanoic Acid 2-Hexyl in Human Adipose Tissue and Serum — 5.7.1 Cyclopropaneoctanoic Acid 2-Hexyl in Patients With Hypertriglyceridemia — 5.8 Leishmania Cyclopropane Fatty Acid Synthetase — 5.8.1 Leishmania: A Fungal Infection — 5.9 Conclusion — References — Further Reading — 6 Modification of Oil Crops to Produce Fatty Acids for Industrial Applications — 6.1 Introduction — 6.2 Key Aspects of Plant Oil Biosynthesis — 6.3 Major Oil Crops — 6.3.1 Oil Palm (Elaeis guineensis) — 6.3.2 Soybean (Glycine max) — 6.3.3 Brassica Oilseed Species (Brassica napus, Brassica rapa, Brassica oleracea, Brassica carinata) — 6.3.4 Sunflower (Helianthus annuus) — 6.4 Minor Oil Crops — 6.4.1 Alfalfa (Medicago sativa, Medicago falcata) — 6.4.2 Almond (Prunus dulcis, Prunus amygdalus, Amygdalus communis) — 6.4.3 Avocado (Persea americana, Persea gratissima) — 6.4.4 Blackcurrant (Ribes niger)

6.4.5 Borage (Borago officinalis) — 6.4.6 Borneo Tallow (Shorea stenoptera) — 6.4.7 Camelina (Camelina sativa) (Section 6.5 Also) — 6.4.8 Castor (Ricinus communis) — 6.4.9 Cocoa (Theobroma cacao) — 6.4.10 Coconut (Cocos nucifera) — 6.4.11 Coriander (Coriandrum sativum) — 6.4.12 Cottonseed (Gossypium hirsutum, Gossypium barbadense) — 6.4.13 Crambe (Crambe abyssinica, Crambe hispanica) (Section 6.5 Also) — 6.4.14 Cuphea spp. — 6.4.15 Dimorphotheca (Dimorphotheca pluvialis) — 6.4.16 Echium (Echium plantagineum) — 6.4.17 Flax (Linum usitatissimum) — 6.4.18 Hazelnut (Corylus avellana) — 6.4.19 Jatropha curcas (See Section 6.5) — 6.4.20 Jojoba (Simmondsia chinensis) — 6.4.21 Lesquerella (Lesquerella fendleri) (See Section 6.5) — 6.4.22 Maize (Corn — Zea mays) — 6.4.23 Meadowfoam (Limnanthes alba) — 6.4.24 Mustard (Brassica alba, Brassica carinata, Brassica hirta, Brassica juncea, Brassica nigra) — 6.4.25 Oats (Avena sativa) — 6.4.26 Olive (Olea europaea) — 6.4.27 Peanut (Ground Nut, Arachis hypogaea) — 6.4.28 Pine Nuts (Pinus spp.) — 6.4.29 Poppy (Papaver somniferum) — 6.4.30 Rice (Oryza sativa) Bran Oil — 6.4.31 Safflower (Carthamus tinctorius) — 6.4.32 Shea (Butyrospermum parkii, Shea Butter, Karate Butter) — 6.4.33 Tall — 6.4.34 Tung (Aleurites fordii) — 6.4.35 Vernonia Oils — 6.5 Emerging Industrial Oil Crops — 6.6 Prospects for Production of Industrial Oils in Vegetative Tissue — Acknowledgments — References — Further Reading — 7 Microbial Production of Fatty Acids — 7.1 Introduction — 7.2 The Process of Lipid Accumulation in Oleaginous Microorganisms — 7.3 Economic Considerations-Heterotrophic Microorganisms — 7.4 Economic Considerations-Phototrophic Microorganisms — 7.5 Production of PUFAs — 7.5.1 Nutritionally Important Fatty Acids-Background Information

7.5.2 Production of Gamma-Linolenic Acid (GLA 18:3 n-6) — 7.5.3 Production of Arachidonic Acid (ARA 20:4 n-6) — 7.5.4 Production of Docosahexaenoic Acid (DHA 22:6 n-3) — 7.5.5 Production of Eicosapentaenoic Acid (EPA 20:5 n-3) — 7.5.6 Production of EPA/DHA Mixtures as Alternatives to Fish Oils — 7.6 Safety Aspects — 7.7 Future Prospects — References — 8 Chemical Derivatization of Castor Oil and Their Industrial Utilization — 8.1 Introduction — 8.2 Derivatives of Castor Oil Based on Unsaturation of Ricinoleic Acid — 8.2.1 Hydrogenated Castor Oil — 8.2.2 Epoxy Castor Oil — 8.2.3 Ozonolysis of Castor Oil — 8.2.4 Preparation of 9,10,12-Trihydroxy Octadecanoic Acid — 8.2.5 Halogenated Derivatives of Castor Oil — 8.2.6 Novel Derivatives of Ricinoleic Acid Employing Metathesis Reaction — 8.3 Derivatives of Castor Oil Based on Hydroxy Functionality of Ricinoleic Acid — 8.3.1 Dehydrated Castor Oil and Dehydrated Castor Oil Fatty Acids — 8.3.2 Sulfated Castor Oil (Turkey Red Oil) — 8.3.3 Acetylated Castor Oil — 8.3.4 Castor Oil-Based Estolides — 8.3.5 Castor Oil-Based Polymer Products — 8.3.6 Potent Hydroxy Derivatives of Ricinoleic Acid — 8.4 Derivatives Based on Ester Functionality of Castor Oil — 8.4.1 Hydroxy Fatty Acid Esters — 8.4.2 Castor Oil-Based Biodiesel — 8.4.3 Preparation of Ricinoleyl Alcohol — 8.4.4 Ricinoleic Acid-Based Amides — 8.4.5 Ethanolamides of Castor Oil Fatty Acids — 8.5 Unique Derivatives of Castor Oil — 8.5.1 Castor Oil-Based Dimer Acids — 8.5.2 10-Undecenoic Acid and Heptaldehyde — 8.5.3 Sebacic Acid and 2-Octanol — References — 9 Chemical Modification of High Free Fatty Acid Oils for Biodiesel Production — 9.1 Introduction — 9.2 Production of Biodiesel — 9.2.1 Types of Feedstocks — 9.2.2 The Potential of High FFA Feedstocks in Biodiesel Production

9.2.3 Challenges of Processing High FFA Feedstocks

————————————————————–

ترجمه ماشینی :

پوشش جلویی – اسیدهای چرب – صفحه کپی رایت – محتویات – لیست مشارکت کنندگان – با ویرایشگر ملاقات کنید – مقدمه – 1 تاریخچه شیمی اسیدهای چرب – 1.1 مقدمه – 1.2 تاریخچه اسید چرب اولیه – 1.3 تحولات مهم در صنعت اولوشیمیایی – 1.3.1 تقسیم چربی – 1.3.1.1 تقسیم چربی مداوم – 1.3.2 هیدروژناسیون کاتالیزوری – 1.3.3 تقطیر اسیدهای چرب – 1.3.4 الکل های چرب – 1.3.4.1 <کلاس کلاس = "ShowmorelessContentElement" سبک = "نمایش: هیچ یک ؛" تری گلیسیریدها - 1.4 سهم شیمی تحلیلی به اسیدهای چرب - 1.5 تحولات اخیر در اسیدهای چرب - 1.6 نتیجه گیری - منابع - 2 اسیدهای چرب که به طور طبیعی رخ می دهد: منبع ، شیمی و استفاده - 2.1 مقدمه - 2.2 تولید طبیعی به طور طبیعی اسیدهای چرب در حال وقوع - 2.2.1 تقسیم شیمیایی - 2.2.2 تقسیم لیپاز - 2.3 تصفیه اسیدهای چرب - 2.3.1 تقطیر ساده - 2.3.2 تقطیر کسری - 2.3.3 تقطیر مولکولی - 2.3.4 تبلور - 2.3.5 کسری اوره - 2.4 منابع و انواع اسیدهای چرب که به طور طبیعی رخ می دهد - 2.4.1 اسیدهای چرب اشباع شده - 2.4.2 اسیدهای چرب اشباع نشده - 2.4.2.1 اسیدهای چرب اشباع نشده - 2.4.2.2 چرب اشباع نشده اشباع شده اسیدها-2.4.2.2.1 اسیدهای چرب اشباع نشده N-6-2.4.2.2.2 اسیدهای چرب اشباع نشده N-3-2.4.2.3 اسیدهای چرب اشباع نشده کونژوگه شده-2.4.3 اسیدهای چرب هیدروکسی-2.4. 4 اسیدهای چرب استیلنیک - 2.4.5 اسیدهای چرب آلنیک و تجمعی - 2.4.5.1 اسیدهای چرب آلنیک - 2.4.5.2 اسیدهای چرب تجمعی - 2.5 شیمی از اسیدهای چرب طبیعی - 2.5.1 واکنش در گروه اسید کربوکسیلیک -2.5.1.1 کاهش-2.5.1.2 استریزاسیون-2.5.1.3 آمین-2.5.1.4 دفع اکسیژن زدایی-2.5.2 واکنش در سایت های اشباع نشده

2.5.2.1 اتوکسیدیت و اکسیژن زدایی-2.5.2.2 هیدروژناسیون – 2.5.2.3 اپوکسیداسیون و هیدروکسیلاسیون- 2.5.2.4 برش اکسیداتیو- 2.5.2.5 متاتز- 2.5.2.6 دیمریزاسیون- 2.5.2.7 هیدروفرمیلاسیون- 2.6 نتیجه گیری- منابع- 3 اسیدهای چرب اپوکسی: شیمی و بیولوژیکی اثرات – 3.1 مقدمه – 3.2 بروز طبیعی و ساختار اسیدهای چرب اپوکسی – 3.2.1 مونوآپوکسیدهای اسید اولئیک و لینولئیک و هیدروکسیدها – 3.2.2 مونوپوکسیدهای اسید آراشیدونیک – 3.2.3 اسید ایکوزاپنتانوئیک و اسید اسید اسید اسید – 3.3 سنتز شیمیایی-3.3.1 اپوکسیداسیون مستقیم-3.3.2 پرکیدرولیز شیمیایی آنزیمی-3.3.3 دیگر اپوکسیداسیون شیمیایی آنزیمی-3.4 بیوسنتز اسیدهای چرب اپوکسی-3.4.1 اکسیژناز و لیپوکسیژناز -3.4.3 اکسیژنازهای مانند سیتوکروم P450-3.5 تجزیه و تحلیل اسیدهای چرب اپوکسی-3.5.1 وضوح regioisomers-3.5.2 وضوح enantiomers-3.5.3 GC/MS و شناسایی LC/MS اپوکسایدهای لیپید – 3.6 اثرات بیولوژیکی- 3.6.1 سیگنالینگ لیپید- 3.6.2 اثرات سلولی- 3.6.3 اثرات سیستمیک- 3.7 اثرات پاتولوژیک- 3.7.1 سمیت- 3.7.2 التهاب و درد- 3.7.3 آنژیوژنز و بیماری قلبی عروقی – 3.7.4 سرطان – 3.8 نتیجه گیری – اختصارات – منابع – 4 اسیدهای چرب اپوکسی استیلنیک: شیمی ، سنتز و کاربردهای دارویی آنها – 4.1 مقدمه – 4.2 وقوع اسیدهای چرب استیلنیک استیلنیک در طبیعت – 4.3 لیپیدهای حاوی اسیدهای چرب اپوکسی استیلنیک- 4.4 اپوکسی استیلنیک فانوئید و اسید چرب تیوفن و مشتقات- 4.5 پیرانون و اپوکسیدهای ماکروسیکلیک اسیدهای چرب اپوکسی استیلنیک- 4.7 تعیین کننده یا اپوکسی استیلیک لیپیدهای لیپیدهای آتیلنیک- 4.8 سنتز سنتز- 4.8 SYNTESESISE از SYNTESESIS OPOXYINICY OF LIPIPIDS- 4.8 لیپیدهای استیلنیک – 4.9 اظهارات نتیجه گیری – منابع – خواندن بیشتر

5 اسیدهای چرب کربوسیکلیک: شیمی و خصوصیات بیولوژیکی – 5.1 مقدمه – 5.2 اسیدهای چرب سیکلوپروپن به طور طبیعی – 5.2.1 آزمایش هالفن – 5.2. 2 جداسازی اسیدهای چرب سیکلوپروپن از روغنهای بذر – 5.2.3 خصوصیات شیمیایی – 5.2.3.1 هیدروژناسیون – 5.2.3.2 اکسیداسیون – 5.2.3.3 کاهش – 5.2.3.4 هالوژناسیون – 5.2.3.5 پلیمریزاسیون – 5.3 سنتز و خصوصیات اسید استرکولیک-5.3.1 خصوصیات اسید دی هیدروسترکولیک-5.3.2 سنتز کل اسیدهای چرب سیکلوپروپان-5.3.3 اسیدهای چرب سیکلوپروپن دوزی-5.4 بیوسنتز سیکلوپروپان و اسیدهای چرب سیکلوپروپن-5.5 جرم 5.5 جرم طیف سنجی اسیدهای چرب سیکلوپروپن-5.5.1 کروماتوگرافی گازی تجزیه و تحلیل طیف سنجی اسیدهای چرب سیکلوپروپن-5.5.2 تجزیه و تحلیل طیف سنجی کروماتوگرافی گاز اسیدهای چرب سیکلوپروپان-5.6 خواص فیزیولوژیکی اسیدهای چرب سیکلوپروپن-5.7 اسید سیکلوپروپانوکتانوئیک 2 -Hexyl در بافت چربی و سرم چربی انسان-5.7.1 اسید سیکلوپروپانوکتانوئیک اسید 2-هگزیل در بیماران مبتلا به هیپرتریگلیسیریدمی-5.8 لیشمانیا سیکلوپروپان اسید چرب-5.8.1 لیشمانیا: یک عفونت قارچی-5.9 نتیجه گیری-بیشتر-منابع بیشتر خواندن – 6 اصلاح محصولات زراعی روغن برای تولید اسیدهای چرب برای کاربردهای صنعتی – 6.1 مقدمه – 6.2 جنبه های اصلی بیوسنتز روغن گیاه – 6.3 محصول عمده روغن – 6.3.1 نخل روغن (Elaeis Guineensis) – 6.3.2 سویا (گلیسین حداکثر) – 6.3.3 گونه روغنی برسیکا (Brassica napus ، Brassica rapa ، Brassica oleracea ، Brassica carinata) – 6.3.4 آفتابگردان (Helianthus annuus) – 6.4 محصول نفتی جزئی – 6.4.1 1 SATIVA ، Medicago Falcata) – 6.4.2 بادام (Prunus dulcis ، Prunus amygdalus ، amygdalus communis) – 6.4.3 آووکادو (Persea americana ، persea gratissima) – 6.4.4 Blackcurrant (Ribes Niger)

6.4.545 Borage (Borago Officalis) – 6.4.6 Borneo Tallow (Shorea Stenoptera) – 6.4.7 Camelina (Camelina sativa) (بخش 6.5) – 6.4.8 Castor (Ricinus Communis) – 6.4.9 Cocoa (Theobroma cacao ) – 6.4.10 نارگیل (Cocos Nucifera) – 6.4.11 گشنیز (Coriandrum sativum) – 6.4.12 پنبه (Gossypium hirsutum ، gossypium barbadense) – 6.4.13 crambe (Crambe abyssinica ، crambe hispanica) (بخش 6.55 همچنین) – 6.4.14 spp cuphea. – 6.4.15 dimorphotheca (dimorphotheca pluvialis)- 6.4.16 اکیوم (اکیوم plantagineum)- 6.4.17 کتان (Linum usitatissimum)- 6.4.18 فندق (کوریلوس Avellana)- 6.4.19 Jatropha curcas (به بخش مراجعه کنید (به بخش) 6.5) – 6.4.20 Jojoba (Simmondsia chinensis) – 6.4.21 Lesquerella (Lesquerella fendleri) (به بخش 6.5 مراجعه کنید) – 6.4.22 ذرت (ذرت – Zea Mays) – 6.4.23 Meadowfoam (Limnanthes alba) – 6.4.24 خردل (Brassica alba ، Brassica Carinata ، Brassica Hirta ، Brassica Juncea ، Brassica nigra)- 6.4.25 OATS (Avena sativa)- 6.4.26 زیتون (Olea Europaea)- 6.4.27 Peanut (Ground Ground NUT ، Arachis Hypogaea) – 6.4.28 آجیل کاج (Pinus spp.) – 6.4.29 خشخاش (Papaver somniferum) – 6.4.30 برنج (Oryza sativa) روغن سبوس – 6.4.31 گلرنگ (Carthamus tinctorius) – – 6.4.32 Shea (Butyrospermum parkii ، کره کره ، کره کاراته) – 6.4.33 بلند – 6.4.34 تنگ (Aleurites fordii) – 6.4.35 روغن ورنونیا – 6.5 محصولات نفتی صنعتی در حال ظهور – 6.6 چشم انداز برای تولید روغنهای صنعتی در بافت رویشی-تأییدیه ها-منابع-خواندن بیشتر-7 تولید میکروبی اسیدهای چرب-7.1 مقدمه-7.2 روند تجمع لیپیدها در میکروارگانیسم های برقی-7.3 میکروارگا


 

tag : دانلود کتاب شیمی ، سنتز و کاربردهای اسیدهای چرب , Download شیمی ، سنتز و کاربردهای اسیدهای چرب , دانلود شیمی ، سنتز و کاربردهای اسیدهای چرب , Download Fatty acids chemistry, synthesis, and applications Book , شیمی ، سنتز و کاربردهای اسیدهای چرب دانلود , buy شیمی ، سنتز و کاربردهای اسیدهای چرب , خرید کتاب شیمی ، سنتز و کاربردهای اسیدهای چرب , دانلود کتاب Fatty acids chemistry, synthesis, and applications , کتاب Fatty acids chemistry, synthesis, and applications , دانلود Fatty acids chemistry, synthesis, and applications , خرید Fatty acids chemistry, synthesis, and applications , خرید کتاب Fatty acids chemistry, synthesis, and applications ,

دیدگاهها

هیچ دیدگاهی برای این محصول نوشته نشده است.

اولین نفری باشید که دیدگاهی را ارسال می کنید برای “دانلود کتاب Fatty acids chemistry, synthesis, and applications – شیمی ، سنتز و کاربردهای اسیدهای چرب”